Haemaphysalis longicornis nymph (rysunek dostosowany z Hoogstraal et al. (1968)) (kliknij na miniaturkę, aby powiększyć obraz).
Haemaphysalis longicornis larva (rysunek zaadaptowany z Hoogstraal et al. (1968)) (kliknij na miniaturkę, aby powiększyć obraz).
Haemaphysalis longicornis male (rysunek zaadaptowany z Hoogstraal et al. (1968)) (kliknij na miniaturkę, aby powiększyć obraz).
Haemaphysalis longicornis samica (rysunek zaadaptowany z Hoogstraal et al. (1968))(kliknij na miniaturkę, aby powiększyć obraz).
Haemaphysalis longicornis Neumann, 1901
Kleszcz zaroślowy
Kleszcz bydlęcy
Nowozelandzki kleszcz bydlęcy
Historia nazewnictwa
Haemaphysalis longicornis Neumann, 1901 (przyjęta nazwa)
Synonimy i błędnie stosowane nazwy:
Haemaphysalis bispinosa Rageau & Vervent, 1959 (nazwa błędnie stosowana)
Haemaphysalis bispinosa neumanni Pospelova-Shtrom, 1940 (synonim)
Haemaphysalis concinna longicornis Neumann, 1905 (synonim)
Haemaphysalis neumanni Dönitz, 1905 (synonim)
Haemaphysalis neumanni bispinosa Abramov & Laptev, 1966 (synonim)
Haemaphysalis (Kaiseriana) longicornis Hoogstraal et al ., 1968 (synonim)
Haemaphysalis (Kaiseriana) neumanni Hoogstraal & Trapido, 1966 (synonim)
Hosts
Haemaphysalis longicornis jest znany z tego, że żywi się szeroką gamą ssaków i ptaków. W Nowej Zelandii gatunek ten został odnotowany jako żerujący na następujących zwierzętach;
- Ssaki
- Opos brushtail (Trichosurus vulpecula), Kot (Felis domesticus), Bydło (Bos taurus), Pies (Canis familiaris), Osioł (Equus asinus), Jeż europejski (Erinaceus europaeus occidentalis), Jeleń daniel (Dama dama dama), Fretka (Mustela furo), Koza (Capra hircus), Koń (Equus caballus), Mysz domowa (Mus musculus), Ludzie (Homo sapiens), szczur norweski (Rattus norvegicus), świnia (Sus scrofa), królik (Lepus cuniculus), jeleń szlachetny (Cervus elaphus scoticus), jeleń ruski (Cervus timorensis), jeleń sambar (Cervus unicolor unicolor), owca (Ovis aries), szczur okrętowy (Rattus rattus), stoza (Mustela erminea), łasica (Mustela nivalis vulgaris), jak (Bos mutus grunniens).
- Ptaki
- Kaczka domowa (Anas boscas var), ptactwo domowe (Gallus gallus), wróbel domowy (Passer domesticus), kiwi, bażant (Phasianus colchicus), skowronek (Alauda arvensis), drozd (Turdus philomelus), indyk (Meleagris gallipavo).
Opis larwy
Z Hoogstraal et al. (1968).
- Długość ciała niezaangażowanego 0,58 do 0,62 mm, szerokość 0,47 do 0,51 mm.
- Capitulum
- Basis capituli grzbietowo 2,6 raza szersza niż dłuższa; cornua zredukowana do zaokrąglonych wypukłości posteroexternal; ventrally, z parą posthypostomnal setae.
- Palpi o zarysie zasadniczo jak u nimfy; brzuszna ostroga członu 3 szeroko trójkątna, zachodzi na przednią jedną czwartą członu 2; setae na członach 2 i 3 w liczbie 3 grzbietowo i 2 brzusznie; setae grzbietowo-wewnętrzne i brzuszno-wewnętrzne pojedyncze.
- Hypostom z wzorem dentystycznym 2/2, zębodoły w. 5, 6, lub 7.
- Scutum około 1,6 razy szersze niż długie; zarys, bruzdy szyjne, punkciki i setony jak na ilustracji.
- Dorsum i ventor jak na ilustracji.
- Nogi coxa I z ostrogą szeroko trójkątną, proporcjonalnie nieco krótszą niż u nimfy; II i Ill każda z lekko wzniesionym grzbietem w miejscu ostrogi. Tarsi, pazury i pulvilli jak na ilustracji.
góra
Opis nimfy
Z Hoogstraal et al. (1968).
- Długość ciała (nierozwinięta) około 1,76 mm, szerokość 1,00 mm.
- Capitulum
- Basis capituli grzbietowo 2 razy szersze niż długie (włączając cornua); brzegi proste; corona szeroko trójkątna, około 0,3 razy dłuższa niż podstawa basis capituli; brzusznie z 2 lub 3 parami posteroexternal setae i parą posthypostomalnych setae
- Palpi dość podobne w zarysie do tych u samicy. Artykuł (segment) 1 pozbawiony setek. Artykuł (segment) 2 z 3 grzbietowymi i 2 brzusznymi setkami; setka dorsointernalna pojedyncza; setka ventrointernalna numer 2. Segment 3 pozbawiony grzbietowej ostrogi; brzuszna ostroga szeroko trójkątna, zachodząca na przednią połowę segmentu 2; długie setemy numer 3 grzbietowo i 5 brzusznie.
- Hypostom w przybliżeniu 1,85 razy dłuższy niż szeroki, wierzchołek szeroko zaokrąglony; korona mała, jedna ósma długości jak zewnętrzne płytki zębowe; wzór dentystyczny 3/3; płytki zębowe w plikach po 6.
- Scutum 1,2,5 raza szersze niż długie, zarys szeroko zaokrąglony; bruzdy szyjne wąskie, równoległe, ciągną się prawie do połowy długości łuski; punkciki rzadkie.
- Spiracular plates subcircular; grzbietowe przedłużenie tępo trójkątne.
- Nogi Coxae z ostrogami jak u samicy. Trochanters brak ostróg brzusznych. Tarsi wąsko wydłużone; powierzchnie grzbietowe płaskie proksymalnie, stopniowo zwężają się dystalnie. Pazury umiarkowane, Pulvilli duże sięgają do lub prawie do apikalnej krzywizny pazurów.
Opis samicy
Z Hoogstraal et al. (1968).
Samica różni się od samca drugorzędowymi cechami płciowymi, ale jest do niego podobna w szczegółach diagnostycznych.
- Długość ciała (niezaangażowana) około 2,65 mm (2,7 do 3,4 mm), szerokość 1,8 mm (1,4 do 2,0 mm).
- Capitulum
- Basis capituli grzbietowo 2,35 razy szersze niż dłuższe (włączając cornua); krawędzie zasadniczo proste; cornua około jednej trzeciej długości jak podstawa basis capituli, szeroko trójkątne, spiczaste; obszary porose owalne do subokrągłych, umiarkowanej wielkości, szeroko rozmieszczone.
- Palpi jak u samca, z wyjątkiem nieco większej długości porównawczej artykułu (segmentu) 3, ostroga brzuszna lancetowata raczej niż szeroko trójkątna, dorsointernal setae number 3, ventrointernal setae number 4 lub 5.
- Hypostom Jak u samca, z wyjątkiem tego, że wierzchołek może być ścięty. Wzór uzębienia 5/5 (wewnętrzny płatek zębowy u mniej niż 1% badanych okazów jest zredukowany lub przestarzały, co daje wzór 4/4 lub 4.5/4.5); płatki zębowe w liczbie od 7 do 9.
- Scutum z proporcją L B 1 1; brzegi nieco kanciaste (stają się bardziej kanciaste podczas rozwoju). Bruzdy szyjne jako wąskie, zbiegające się wgłębienia od przedniego wyrostka do poziomu przedniej jednej trzeciej długości łuski, kontynuowane jako płytkie, rozchodzące się wgłębienia do poziomu tylnej jednej trzeciej długości łuski. Nakłucia jak u samca.
- Operculum genitalne proste, wydłużone, zarys stopniowo zbiegający do ściętej tylnej krawędzi.
Płytki płciowe z brzuszną krawędzią kanciasto wypukłą; grzbietowy występ krótki, tępy, ledwo, jeśli w ogóle, odróżniający się od samej płytki. - Nogi w przybliżeniu jak u samca. Koma z ostrogami od II do IV wystającymi daleko poza tylny brzeg kośćca. Trochanter I z brzuszną ostrogą bardziej zaokrągloną i krótszą niż u samca. Inne cechy nóg zasadniczo jak u samca.
Opis samca
Z Hoogstraal et al. (1968).
- Długość ciała od nasady paliczków do tylnego marginesu łopatkowego około 2,51 mm, szerokość 1,65 mm. Kolor czerwonawo-żółty.
- Capitulum
- Basis capituli grzbietowo około 1,66 raza szersza niż dłuższa (włączając cornua), krawędzie zasadniczo proste; corona trójkątna, spiczasta, długość równa przedniej szerokości, połowa długości jak podstawa basis capituli; brzusznie z 5 parami krótkich tylnych setek i 1 parą krótkich posthypostomalnych setek.
- Palpi umiarkowanie silnie wyciągnięte ku tyłowi; łączna szerokość około 1,35 razy większa od podstawy Capituli; każde palp około 1,40 razy dłuższe od szerokości. Artykuł (segment) 1 – wąska szypułka z pojedynczym brzusznym setonem. Artykuł (segment) 2 w przybliżeniu 1,3 raza szerszy niż dłuższy; tylne krawędzie grzbietowo i brzusznie zakrzywione przednio od wewnętrznej krawędzi do zewnętrznej powierzchni; profil zewnętrzny 0.6 razy dłuższy od krawędzi wewnętrznej, ostro zbiegający do krawędzi przedniej; połączenie tylno-zewnętrzne tworzy mały, zewnętrznie skierowany trójkąt; grzbietowo-wewnętrzna krawędź w przybliżeniu prosta, lekko wybrzuszona przednio; brzuszno-wewnętrzna krawędź prawie prosta; liczba setae 4 lub 5 grzbietowo (mogą się różnić po obu stronach), 3 brzusznie; liczba setae grzbietowo-wewnętrznych 2, liczba setae brzuszno-wewnętrznych 4. Artykuł (segment) 3 (z wyjątkiem grzbietowej ostrogi) nieco krótszy niż 2 i szerszy z tyłu niż 2 z przodu (tworząc w ten sposób zewnętrznie niewielką przerwę w profilu palpacyjnym w miejscu połączenia tych segmentów); grzbietowa ostroga przyśrodkowa, wzniesiona, szeroko trójkątna, ostro zakończona, zachodząca na przednią jedną trzecią segmentu 2; profil zewnętrzny zbieżny z tępo zaokrąglonym wierzchołkiem; grzbietowo-wewnętrzny brzeg zaokrąglony; brzuszna ostroga szeroko trójkątna, wąsko spiczasta, sięgająca do połowy długości segmentu 2; liczba setek 5 grzbietowo, 3 brzusznie i 3 na wewnętrznym brzegu brzusznie.
- Hypostom krótki, mocny, nie tak długi jak palpi, 2 razy dłuższy niż szeroki; wierzchołek stopniowo zaokrąglony; korona umiarkowanie gęsta, w przybliżeniu jedna szósta długości jak akta zębowe; wzór dentystyczny 5/5; akta zębowe w aktach od 8 do 10.
- Scutum płaskie, szeroko owalne, stosunek L:B 1,3:1,0; zarys najszerszy na poziomie coxa IV i płytek spiczastych, wszystkie krawędzie szeroko zaokrąglone; wierzchołki płytek spiczastych niewidoczne w widoku od strony grzbietowej. Bruzdy boczne wąskie, wyraźne, ciągną się do poziomu przedniej jednej trzeciej długości łopatki, obejmują pierwszy feston. Rowki szyjne jako wąskie, krótkie, zbiegające się wgłębienia. Nakłucia liczne, dyskretne, umiarkowanie głębokie, małe i średniej wielkości, dość regularnie rozmieszczone na całej powierzchni. Festony w liczbie 11.
- Płyty spiracularne subkwadratowe; projekcja grzbietowa tępa i niezróżnicowana od samej płyty.
- Nogi Kość krzyżowa I z ostrogą wydłużoną, podobną do kręgosłupa, tępo zakończoną, długość i szerokość podstawy ostrogi w przybliżeniu równa, sięgająca do, ale nie wykraczająca poza przedni brzeg kości krzyżowej II; kości krzyżowe II i III, każda z nierówną, krótką, szeroko trójkątną ostrogą, sięgającą tylko nieznacznie poza tylny brzeg; kość krzyżowa IV z podobną, ale nieco mniejszą ostrogą. Trochanter I z grzbietową płytką trójkątną, ostro zakończoną; brzuszna ostroga trójkątna, w przybliżeniu jedna trzecia długości jak ostroga coxa I; pozostałe trochantery brzusznie ze spiczastymi, podobnymi do ostrogi wzniesieniami, coraz mniejszymi od II do IV. Kość udowa IV z 8 brzuszno-wewnętrznymi setkami, z których każda jest w przybliżeniu o połowę dłuższa niż średnica kości udowej w miejscu jej wprowadzenia (Rys. H). Strzemiona I do III umiarkowanie długie, IV długie; powierzchnie grzbietowe płaskie proksymalnie, stopniowo zwężające się dystalnie; powierzchnie brzuszne z niewielkim haczykiem subapikalnym, a II do IV z niewielkim kanciastym grzbietem subproksymalnie. Pazurki umiarkowane, Pulvilli sięgają prawie do apikalnej krzywizny pazurków.
Zależności chorobowe
W Nowej Zelandii H. longicornis przenosi niewiele chorób, jedynym wyjątkiem jest stosunkowo łagodna Theileria orientalis. Jednakże H. longicornis może przenosić piroplazmoryny, takie jak; Babesia major, B. bigemina, B. ovata, B. gibsoni, Rickettsia japonica, Coxiella burneti i T. mutans, jak również wirusy, które powodują; rosyjskie wiosenno-letnie zapalenie mózgu i zapalenie mózgu Powassan, istnieją również sugestie, że kleszcze Haemaphysalid takie jak H. longicornis zarówno w Japonii jak i Chinach przenoszą Borrelia spp.*
*Lista ta nie ma być wyczerpująca.
Dystrybucja
Haemaphysalis longicornis prawdopodobnie dotarł do Nowej Zelandii przez Japonię i Australię. Najczęściej występuje na półwyspie North Auckland i na wschodnim wybrzeżu Wyspy Północnej aż do Hastings na południe. Na zachodnim wybrzeżu Wyspy Północnej występuje tak daleko na południe jak Waikanae. Został on odnotowany w centralnej części Wyspy Północnej wokół Taupo, Parku Narodowego i Taumarunui oraz w obszarze Golden Bay na Wyspie Południowej.
Ten gatunek kleszcza występuje również w Australii (Queensland, Nowa Południowa Walia, Wiktoria i Zachodnia Australia), Chinach (Heilongjiang, Jilin, Liaoning, Hebei, Shanxi, Shaanxi, Gansu, Shandong, Henan, Anhui, Jiangsu, Hubei, Sichuan, Yunnan, i Tybet), Fidżi, Japonia, Półwysep Koreański, Nowe Hebrydy, Nowa Kaledonia, Rosja (południowy Primorsky Kray), Tonga i Samoa Zachodnie.
góra
Status w Nowej Zelandii
Wprowadzenie
Uwagi, cechy identyfikacyjne i podobne gatunki
Biologia
Haemaphysalis longicornis jest kleszczem o trzech żywicielach, który rozmnaża się przez partenogenezę w dużej części swojego zasięgu. W Nowej Zelandii samice H. longicornis składają jaja późną wiosną i wczesnym latem. Jaja te wylęgają się w ciągu około 60-90 dni, w zależności od temperatury i wilgotności powietrza. Pojawiające się larwy wspinają się po roślinności, gdzie czekają na odpowiedniego żywiciela, który przechodzi w pobliżu; są one przyciągane przez połączenie ciepła jego ciała i wydychanego dwutlenku węgla. W ciągu godziny od przeniesienia się na żywiciela larwa przyczepia się do skóry za pomocą aparatu gębowego i pozostaje na niej do 5 dni, wyraźnie zwiększając swoje rozmiary tylko w ciągu 24 godzin poprzedzających oderwanie. Po całkowitym wypełnieniu krwią larwa opada na ziemię, znajduje ciemną, wilgotną kryjówkę i wchodzi w fazę przedwylęgową, która może trwać do 30 dni, w zależności od temperatury i wilgotności powietrza. Miejsca ukrycia dla tej fazy obejmują szczeliny, pod liśćmi, lub w macie korzeniowej traw i szuwarów.
Larwa następnie moults do drugiego lub nimfy etapie . Nieodżywione kleszcze są często znajdowane w tych samych miejscach, co w pełni rozwinięte stadia. Po całkowitym „zahartowaniu” (fizjologicznie gotowa) nimfa wspina się na pędy sitowia lub trawy i szuka żywiciela. Nimfa żeruje na żywicielu do 7 dni, odrywa się, gdy jest w pełni rozwinięta i spędza około 40 dni, ukrywając się pod roślinnością, zanim przeobrazi się w trzecie lub dorosłe stadium. Samica kleszcza poszukuje teraz żywiciela, żeruje przez 7 dni lub dłużej, w zależności od temperatury, a po oderwaniu się od żywiciela poszukuje odpowiedniego miejsca do złożenia jaj. Po 1-2 tygodniach zaczyna składać jaja i może ich złożyć do 2000 w ciągu 2-3 tygodni. Samica często przeżywa przez kolejne 2 lub 3 tygodnie po złożeniu jaj.
Sezonowe wzorce aktywności tego kleszcza mogą się różnić z roku na rok, w zależności od klimatu (patrz diagram cyklu życiowego). W północnych obszarach Nowej Zelandii, które są ciepłe, wilgotne i mają łagodne zimy, co najmniej dwa pokolenia występują każdego roku, a larwy można znaleźć w dość dużych ilościach wczesną wiosną, jak również latem i jesienią. Ponadto osobniki dorosłe i nimfy można znaleźć na zwierzętach żywicielskich prawie o każdej porze roku z wyjątkiem połowy zimy. W przeciwieństwie do tego, na obszarach umiarkowanych z ostrzejszymi zimami, stadia rozwojowe są bardzo wyraźne i tylko jedno pokolenie występuje każdego roku; zwierzęta gospodarskie są wolne od kleszczy podczas drugiej części jesieni, całej zimy i wczesnej wiosny. Wszystkie niedokarmione stadia kleszcza mogą zimować, ale najczęściej robią to nimfy.
Podobne gatunki
Obecnie (2009) H. logicornis jest jedynym przedstawicielem rodzaju Haemaphysalis, który występuje w Nowej Zelandii. Dlatego łatwo go rozpoznać po rowku odbytowym obejmującym odbyt od tyłu, obecności festonów i palpach, których drugi segment jest wydłużony na boki. Jednakże w przypadku jakichkolwiek podejrzeń co do tożsamości okazu należy go porównać z cechami i wizerunkami przedstawionymi w powyższych sekcjach.
Przydatne źródła
Barker SC & Murrell A 2004. Systematyka i ewolucja kleszczy z wykazem ważnych nazw rodzajowych i gatunkowych. Parasitology, 129: S15-S36.
Bishop DM. & Heath ACG 1998. Checklist of ectoparasites of birds in New Zealand. Surveillance. Special Issue: Parasites of Birds in New Zealand. 25: 13-31.
Camicas JL, Hervy JP, Adam F & Morel PC 1998. Les Tiques de Monde. Nomenklatura, stades decrits, hotes, repartition. Kleszcze świata. Nomenklatura, opisane stadia rozwojowe, żywiciele, rozmieszczenie (Acarida, Ixodida). France , Orstom Editions.
Dumbleton LJ 1963. A synopsis of the ticks (Acarina: Ixodoidea) of New Zealand. Tuatara 11: 72-78.
Heath ACG 1987. A review of the origins and zoogeography of tick-borne disease in New Zealand. Tuatara 29: 19-29.
Heath ACG 2002. Vector competence of Haemaphysalis longicornis with particular reference to blood parasites. Surveillance, 29: 12-14.
Hoogstraal H, Roberts FHS, Kohls GM & Tipton VJ 1968. Review of Haemaphysalis (Kaiseriana) longicornis Neumann (resurrected) of Australia New Zealand New Caledonia Fiji Japan Korea and Northeastern China and USSR and Its parthenogenetic and bisexual populations (Ixodoidea Ixodidae). Journal of Parasitology, 54: 1197-1213.
.