Machupo virus
KARTA DANYCH BEZPIECZEŃSTWA PATHOGENU – SUBSTANCJE NIEBEZPIECZNE
SEKCJA I – CZYNNIKI INFEKCYJNE
NAZWA: Machupo virus
SYNONYM LUB ODNOŚNIKIEM KRÓTKOTWÓRCZYM: Wirusowa gorączka krwotoczna (VHF), Boliwijska gorączka krwotoczna (BHF), Południowoamerykańska gorączka krwotoczna, Arenavirus, czarny tyfus, Gorączka Ordoga(1).
CHARAKTERYSTYKA: Wirus Machupo został po raz pierwszy wyizolowany w 1959 roku i jest Arenavirusem Nowego Świata z rodziny Arenaviridae. Jest kulisty i pleomorficzny, o średnicy od 50 do 300 nm (średnio 120 nm), posiada genom RNA, który jest jednoniciowy i dwusegmentowy. Wewnątrz wirusa znajdują się rybosomy, które nadają mu charakterystyczny piaskowy wygląd w mikroskopie elektronowym, a on sam otoczony jest gęstą otoczką zawierającą lipidy, z wystającymi pałeczkowatymi wypustkami o długości 8 – 10 nm(1,2).
SEKCJA II – IDENTYFIKACJA ZAGROŻEŃ
PATHOGENICITY/TOXICITY: Dominujące cechy kliniczne krwotoku wirusowego obejmują uszkodzenie mikronaczyń i zmiany w przepuszczalności naczyń, gorączkę, myalgię (bóle mięśniowe) i wyczerpanie(3). Początkowe objawy mogą obejmować nastrzyknięcie spojówek, łagodne nadciśnienie, zaczerwienienie, krwawienie z dziąseł i jamy ustnej, ból głowy, bóle stawów i wybroczyny. Objawy mogą dalej rozwijać się do wstrząsu i uogólnionego krwawienia z błon śluzowych, krwawienia z nosa, krwawienia z dróg oddechowych, melenę, krwiomocz, którym towarzyszą uszkodzenia neurologiczne, takie jak drżenie, drgawki i śpiączka(4). Wskaźnik śmiertelności podczas epidemii w 1960 r. wynosił 22%.
EPIDEMIOLOGIA: Występowanie jest skoncentrowane w Boliwii i obszarach przyległych. Występowanie wirusa Machupo jest ograniczone do lokalizacji jego specyficznych żywicieli gryzoni, które są powszechnie spotykane na tropikalnych łąkach i w regionach lasów umiarkowanych, na równinach wschodniej Boliwii, w północnym Paragwaju i zachodniej Brazylii(4). W latach 1962-1964 w Boliwii odnotowano epidemię obejmującą ponad 1000 przypadków, która wystąpiła wraz ze wzrostem populacji gryzoni Calomys (myszoskoczek), a śmiertelność wynosiła 18%. Kolejne ognisko oparte wyłącznie na transmisji wewnątrzszpitalnej zaobserwowano w 1971 roku w Cochabamba w Boliwii(5). Zachorowalność jest najwyższa w sezonie żniw od marca do czerwca(1).
ZAKRES GOSPODARCZY: Gryzonie są pierwotnymi i najczęstszymi żywicielami w przyrodzie(1). Zakażeniu mogą ulec również ludzie, kleszcze i komary.
DAWKA NIEBEZPIECZNA: 1-10 organizmów przenoszonych drogą aerozolową wystarcza do wywołania klinicznego zakażenia u ludzi(3).
SPOSÓB TRANSMISJI: Wirus rozprzestrzenia się głównie poprzez aerozolowe przenoszenie cząsteczek kurzu z odchodów lub wydzielin zakażonych gryzoni(1). Obserwowano również przenoszenie wewnątrzszpitalne.
OKRES INKUBACJI: 4 – 21 dni(3).
KOMUNIKOWALNOŚĆ: Chociaż rzadko, możliwe jest przenoszenie wirusa z osoby na osobę poprzez transmisję wewnątrzszpitalną(1,4,6).
SEKCJA III – ROZPRZESTRZENIANIE
PODŁOŻA: Gryzonie, głównie Calomys callosus (duża mysz pęcherzykowata)(6).
ZOONOZA: Tak – wirus jest najczęściej przenoszony na ludzi przez rany po ugryzieniu kleszczy zamieszkujących zakażone gryzonie(1), komary(1) lub przez wdychanie mikroareozoli pochodzących od zakażonych gryzoni(7).
WEKTORY: Kleszcze i komary są głównymi wektorami(1).
SETION IV – STABILNOŚĆ I DŁUGOTRWAŁOŚĆ
ZALEŻNOŚĆ OD LEKÓW: Leczenie rybawiryną boliwijskiej gorączki krwotocznej wywołanej wirusem Machupo było stosowane z powodzeniem u bardzo małej liczby zakażonych ludzi, chociaż wymagane są bardziej szczegółowe badania w celu określenia jego skuteczności(2,3,8). Rybawiryna jest zalecana w leczeniu osób zakażonych blisko spokrewnionym wirusem gorączki Lassa, a rybawiryna okazała się obiecująca w leczeniu zakażeń u ludzi innymi arenowirusami, w tym wirusem Junin i wirusem Sabia(2,9,10).
WRAŻLIWOŚĆ NA ŚRODKI DEZYNFEKCYJNE: Wrażliwy na 1% podchloryn sodu, fenolowe środki dezynfekcyjne i 2% aldehyd glutarowy(11).
INAKTYWACJA FIZYCZNA: Wirus może być inaktywowany przez ogrzewanie w temperaturze 56 C, przy pH poniżej 5,5 lub powyżej 8,5 oraz przez naświetlanie promieniami UV i gamma(11).
Życie poza organizmem żywiciela: Wirusy gorączki krwotocznej nie mogą przetrwać w suchym środowisku, ale mogą przetrwać do 2 tygodni w próbkach krwi poza organizmem żywiciela(12).
SEKCJA V – PIERWSZA POMOC / MEDYCYNA
UWAGA: Monitorować pod kątem objawów. Krwotok wirusowy i zakażenie Machupo powinny być podejrzewane w przypadkach ciężkiej choroby gorączkowej z dowodami uszkodzenia naczyń krwionośnych. Diagnozę można potwierdzić za pomocą serologii (np. ELISA), PCR oraz technik ostatecznej izolacji wirusa(3).
Uwaga: Wszystkie metody diagnostyczne nie muszą być dostępne we wszystkich krajach.
PIERWSZA POMOC/LECZENIE: Podać odpowiednie leczenie farmakologiczne. Leczenie z zastosowaniem rybawiryny jest najskuteczniejsze, gdy zostanie zastosowane w ciągu 7 dni od wystąpienia objawów, jak to stwierdzono w przypadku wirusa Lassa. Szybka, nieurazowa hospitalizacja może zapobiec uszkodzeniu naczyń włosowatych, które mogą być kruche w obecności infekcji, dlatego należy unikać linii dożylnych, cewników i innych urządzeń inwazyjnych(3). Pacjenci są na ogół odwodnieni, źle reagują na infuzje płynów i może u nich wystąpić obrzęk płuc.
IMMUNIZACJA: Badania ochronne na zwierzętach wykazały, że żywa atenuowana szczepionka Candid #1 stosowana w przypadku wirusa Junin może być również skuteczna przeciwko wirusowi Machupo(13). Szczepionka Candid #1 została przebadana na ochotnikach i przeszła testy bezpieczeństwa i immunogenności w USA. Podano ją 6500 pracownikom rolnym w Argentynie podczas dwóch sezonów epidemicznych, a jej skuteczność stwierdzono na poziomie około 84% lub wyższym, bez poważnych skutków ubocznych.
PROPHYLAXIS: Unikanie kontaktu z gryzoniami(13). Rybawiryna była stosowana profilaktycznie w populacjach zagrożonych w celu zapobiegania zakażeniom wirusem Lassa(2).
SEKCJA VI – ZAGROŻENIA LABORATORYJNE
ZAKAŻENIA NABYTE W TRAKCIE PRACY: Do 1980 roku zgłoszono 6 przypadków, z których jeden zakończył się zgonem, a podejrzewanym źródłem było przenoszenie aerozoli(14,15).
ŹRÓDŁA/SPECIMENY: Zakażona krew lub produkty krwiopochodne oraz wydaliny lub wydzieliny zakażonych organizmów(1,12).
PIERWOTNE ZAGROŻENIA: Przypadkowa inokulacja pozajelitowa, kontakt z błonami śluzowymi oraz aerozole przenoszące wirusa(1,12).
SPECJALNE ZAGROŻENIA: Kontakt z odchodami lub mikroaerozolami przenoszącymi wirusa uwalnianymi przez zakażone zwierzęta(1).
SEKCJA VII – KONTROLA NARAŻENIA / OCHRONA OSOBISTA
KLASYFIKACJA GRUPY RYZYKA: Grupa ryzyka 4(16).
WYMAGANIA DOTYCZĄCE OGRANICZANIA ROZPRZESTRZENIANIA SIĘ SKAŻENIA: Poziom hermetyczności 4 – urządzenia, sprzęt i praktyki operacyjne do pracy z materiałami zakaźnymi lub potencjalnie zakaźnymi, zwierzętami lub kulturami.
UBRANIE OCHRONNE: Personel wchodzący do laboratorium musi zdjąć odzież uliczną, w tym bieliznę i biżuterię, i przebrać się w odzież i obuwie laboratoryjne lub założyć odzież ochronną w pełnym zakresie (tj. całkowicie zakrywającą odzież uliczną). Przy bezpośrednim kontakcie z materiałami zakaźnymi na ubranie laboratoryjne można nałożyć dodatkową ochronę, taką jak fartuch z pełnym przodem i ściśle przylegającymi nadgarstkami, rękawice i ochronę dróg oddechowych. Ochrona oczu musi być stosowana tam, gdzie istnieje znane lub potencjalne ryzyko narażenia na rozpryski(17).
INNE ŚRODKI OSTROŻNOŚCI: Wszystkie czynności z materiałem zakaźnym powinny być prowadzone w szafie bezpieczeństwa biologicznego (BSC) w połączeniu z kombinezonem dodatniego ciśnienia lub w obrębie linii BSC klasy III. Wirowanie zakażonych materiałów musi być przeprowadzane w zamkniętych pojemnikach umieszczonych w szczelnych kubkach bezpieczeństwa lub w wirnikach, które są ładowane lub rozładowywane w szafie bezpieczeństwa biologicznego. Integralność kombinezonów ciśnieniowych musi być rutynowo sprawdzana pod kątem nieszczelności. Należy ściśle ograniczyć używanie igieł, strzykawek i innych ostrych przedmiotów. Otwarte rany, skaleczenia, zadrapania i otarcia powinny być przykryte wodoodpornymi opatrunkami. Dodatkowe środki ostrożności należy rozważyć w przypadku pracy związanej z aktywnością zwierząt(17).
SEKCJA VIII – POSTĘPOWANIE Z SUBSTANCJĄ I JEJ MAGAZYNOWANIE
ROZSYPANIA: Poczekać, aż aerozole opadną i założyć ubranie ochronne, delikatnie przykryć rozlany płyn ręcznikami papierowymi i zastosować odpowiedni środek dezynfekujący, zaczynając od obwodu i kierując się do środka. Pozostawić wystarczający czas kontaktu przed czyszczeniem (30 min)(17).
USUWANIE: Odkazić wszystkie materiały przeznaczone do usunięcia z laboratorium zamkniętego poprzez sterylizację parą wodną, dezynfekcję chemiczną, spalenie lub metodami gazowymi. Materiały skażone obejmują zarówno odpady płynne jak i stałe(17).
SKŁADOWANIE: W szczelnych, nieprzeciekających pojemnikach, które są odpowiednio oznakowane i zamknięte w laboratorium Containment Level 4(17).
SEKCJA IX – INFORMACJE DOTYCZĄCE PRZEPISÓW I INNE INFORMACJE
INFORMACJE DOTYCZĄCE PRZEPISÓW: Import, transport i stosowanie patogenów w Kanadzie jest regulowane przez wiele organów regulacyjnych, w tym Kanadyjską Agencję Zdrowia Publicznego, Health Canada, Kanadyjską Agencję Inspekcji Żywności, Environment Canada i Transport Canada. Użytkownicy są odpowiedzialni za zapewnienie zgodności z wszystkimi odpowiednimi aktami prawnymi, przepisami, wytycznymi i normami.
AKTUALIZACJA: Wrzesień 2010.
PRZYGOTOWANE PRZEZ: Pathogen Regulation Directorate, Public Health Agency of Canada.
Ale informacje, opinie i zalecenia zawarte w tej Karcie Bezpieczeństwa Patogenu zostały zebrane ze źródeł uważanych za wiarygodne, nie ponosimy odpowiedzialności za ich dokładność, wystarczalność lub wiarygodność ani za jakiekolwiek straty lub obrażenia wynikające z wykorzystania tych informacji. Często pojawiają się nowe zagrożenia i informacje te mogą nie być w pełni aktualne.